🪰 Mosca blanca en el cultivo de cannabis: biología, síntomas y condiciones de riesgo

Hoja de cannabis con mosca blanca volando en un invernadero, mostrando síntomas de infestación y adultos visibles en el aire.

🔬 Introducción

La mosca blanca es el nombre común que se da a varias especies de insectos hemípteros de la familia Aleyrodidae, siendo las más comunes en el cannabis Trialeurodes vaporariorum (mosca blanca de los invernaderos) y Bemisia tabaci (mosca blanca del tabaco) (Byrne & Bellows, 1991). A pesar de su nombre, no se trata de verdaderas moscas, sino de insectos alados emparentados con los pulgones y las cochinillas.

Estas plagas representan un desafío creciente en el cultivo de cannabis tanto indoor como outdoor, por su alta tasa reproductiva, resistencia a pesticidas y capacidad para transmitir virus vegetales (Navas-Castillo et al., 2011).


🧬 Ficha taxonómica

ClasificaciónTrialeurodes vaporariorum / Bemisia tabaci
ReinoAnimalia
FiloArthropoda
ClaseInsecta
OrdenHemiptera
FamiliaAleyrodidae
GéneroTrialeurodes / Bemisia

Macro de hoja de cannabis infestada con huevos, ninfas y adultos de mosca blanca en distintas fases del ciclo de vida.

🧪 Morfología e identificación

  • Adulto: insecto blanco, alado, de aproximadamente 1-2 mm. Alas recubiertas de una capa cerosa blanca.
  • Huevos: ovalados, depositados en el envés de las hojas.
  • Ninfas: aspecto translúcido, con forma de escudo. Las últimas fases son inmóviles.

Una población activa puede observarse fácilmente al agitar las hojas: los adultos volarán en pequeños enjambres. Las ninfas, en cambio, requieren inspección visual minuciosa del envés.


♻️ Ciclo biológico

El ciclo completo, desde huevo a adulto, varía entre 18 y 25 días dependiendo de la temperatura (50% más rápido a 28-30°C). Se divide en 6 fases:

  1. Huevo
  2. Ninfa I (crawler)
  3. Ninfa II-III (sedentaria)
  4. Pupa (cuarta fase ninfal)
  5. Adulto

Las hembras pueden poner hasta 400 huevos, lo que permite explosiones poblacionales si no se controlan adecuadamente (Ode & Heinz, 2002).


🍁 Síntomas y daños en el cannabis

  • Decoloración y amarilleo de hojas
  • Presencia de melaza pegajosa sobre la superficie foliar
  • Aparición de fumagina (hongo negro que se alimenta de la melaza)
  • Retraso en el crecimiento
  • Reducción en la fotosíntesis
  • Transmisión de virus (en especial por Bemisia tabaci)

Los daños indirectos, como la proliferación de fumagina y virus, pueden ser más severos que la alimentación en sí misma.


⚠️ Factores que favorecen su proliferación

  • Alta humedad relativa (60-80%)
  • Temperaturas templadas (20-30°C)
  • Cultivos densos y mal ventilados
  • Exceso de nitrógeno
  • Ausencia de depredadores naturales

🧠 Diagnóstico y control de la mosca blanca en el cannabis: enfoque científico y sostenible

🧪 Diagnóstico precoz: claves para una detección efectiva

El diagnóstico temprano es fundamental para evitar explosiones poblacionales de mosca blanca. La observación visual debe ser sistemática, especialmente en ambientes controlados como invernaderos o cultivos indoor.

🔍 Métodos de detección recomendados:

  • Inspección del envés de hojas jóvenes, donde se concentran los huevos y ninfas.
  • Sacudida de plantas sobre fondo oscuro, lo que permite ver adultos volar.
  • Trampas cromáticas amarillas, que atraen adultos mediante estímulo visual (Buckner et al., 2004).
  • Lupa 10x o microscopio de mano, útil para identificar fases ninfales y pupas.
  • Índices de infestación visual, como los propuestos en cultivos hortícolas, adaptables a cannabis.

Un umbral de intervención sugerido es de 3-5 adultos por hoja o más de 20% de hojas con signos ninfales (Heinz et al., 1996).


🛠️ Estrategias de control: físico, biológico y químico

🧼 Control físico y preventivo

  • Aspirado manual en fases adultas (eficaz en indoor).
  • Uso de mallas anti-insectos en entradas y ventilaciones.
  • Trampas cromáticas (amarillas con pegamento) para monitoreo y reducción poblacional.
  • Limpieza constante del cultivo y eliminación de restos vegetales.
  • Reducción de nitrógeno disponible, que favorece tejidos blandos y suculentos.

🐞 Control biológico: enemigos naturales eficaces

Varios insectos entomófagos se emplean con éxito en cannabis para reducir poblaciones de mosca blanca sin recurrir a pesticidas.

Principales enemigos naturales:

Agente biológicoEspecie más eficazNotas
Avispa parasitoideEncarsia formosaMuy eficaz en T. vaporariorum
Avispa parasitoideEretmocerus eremicusMejor en climas cálidos
Depredador generalistaMacrolophus pygmaeusCompatible con parasitoides
Hongo entomopatógenoBeauveria bassianaAlta mortalidad si se aplica correctamente

Encarsia formosa puede eliminar más del 80% de una población en 2 semanas bajo condiciones adecuadas (Cuthbertson et al., 2003).

Para un control efectivo:

  • Aplicar parasitoides al inicio de la infestación
  • Mantener temperaturas moderadas (22-28°C)
  • Evitar tratamientos químicos incompatibles

☠️ Control químico: uso responsable

Debe ser el último recurso y solo aplicarse con cuidado, sobre todo en floración. Se recomienda:

  • Productos autorizados para cannabis (consultar legislación local)
  • Compatibilidad con enemigos naturales
  • Rotación de ingredientes activos para evitar resistencias

Acaricidas/insecticidas más usados:

  • Aceite de neem (azadiractina)
  • Jabón potásico
  • Piretrinas naturales (en estados iniciales)
  • Spinosad (Saccharopolyspora spinosa)
  • Extracto de ajo y cítricos (uso ecológico)

Nota: Evitar productos sistémicos no aprobados para cannabis, ya que pueden dejar residuos peligrosos en los cogollos.

📋 Casos reales, estrategias comparadas y bibliografía científica sobre la mosca blanca en el cannabis

🔬 Casos reales de infestación y manejo exitoso

🧪 Caso 1: Cultivo indoor con T. vaporariorum – Girona

  • Condiciones: Temperatura constante de 26 °C, humedad del 60%, 9 plantas en crecimiento vegetativo.
  • Síntomas: hojas pegajosas, adultos visibles al agitar las plantas, aparición de fumagina.
  • Acciones: aplicación de jabón potásico al 2% en hojas + liberación de Encarsia formosa (5 individuos/planta) + instalación de trampas cromáticas amarillas.
  • Resultado: disminución visible en 7 días, erradicación en 18 días, sin uso de pesticidas.

🧪 Caso 2: Cultivo outdoor con Bemisia tabaci – Andalucía

  • Condiciones: calor extremo (32–34 °C), plantas en floración, fertilización alta en nitrógeno.
  • Síntomas: amarillamiento foliar, melaza, colonias visibles de ninfas, caída de hojas viejas.
  • Acciones: poda sanitaria, reducción de riego y fertilización, aplicación foliar de Beauveria bassiana + extracto de ajo.
  • Resultado: reducción del 70% en 10 días, control biológico complementado con nuevas liberaciones.

📊 Comparativa de estrategias

Tipo de controlEficaciaImpacto ambientalCostoRecomendación
Trampas cromáticasModeradaNuloBajoIdeal para monitoreo y refuerzo
Jabón potásicoModeradaBajoBajoAplicación precoz
Parasitoides (Encarsia)AltaMuy bajoMedioRecomendado para cultivos indoor
Fitosanitarios sistémicosAltaAltoAltoEvitar si no están autorizados

📚 Referencias científicas

  • Byrne, D. N., & Bellows, T. S. (1991). Whitefly biology. Annual Review of Entomology, 36(1), 431–457.
    👉 https://doi.org/10.1146/annurev.en.36.010191.002243
  • Navas-Castillo, J., Fiallo-Olivé, E., & Sánchez-Campos, S. (2011). Emerging virus diseases transmitted by whiteflies. Annual Review of Phytopathology, 49, 219–248.
    👉 https://doi.org/10.1146/annurev-phyto-072910-095235
  • Heinz, K. M., Natwick, E. T., & Nelson, J. M. (1996). Bemisia argentifolii and biological control in greenhouse vegetables. Southwestern Entomologist, 21(3), 241–256.
  • Buckner, J. S., Nelson, D. R., & Shapiro, J. P. (2004). Characterization of the whitefly Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae) wax. Archives of Insect Biochemistry and Physiology, 55(2), 66–79.
    👉 https://doi.org/10.1002/arch.10121
  • Cuthbertson, A. G. S., Northing, P., Luo, W., Cannon, R. J. C., & Walters, K. F. A. (2003). The susceptibility of the greenhouse whitefly (Trialeurodes vaporariorum) to the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana under different temperature regimes. Journal of Invertebrate Pathology, 84(3), 188–192.
    👉 https://doi.org/10.1016/j.jip.2003.10.002

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